Evaluation of fungicides and Trichoderma spp. for controlling soil-borne fungal pathogens in melon crops

Breno de Holanda Almeida; Andréia Mitsa Paiva Negreiros; Naama Jessica de Assis Melo; Márcia Michelle de Queiroz Ambrósio; Josep  Armengol; Washington  da Silva; Rui Sales Júnior

doi:10.1590/1983-21252024v3712462rc

Autores

Breno de Holanda Almeida Department of Agronomic and Forestry Sciences, Universidade Federal Rural do Semi-Árido, Mossoró, RN, Brazil https://orcid.org/0000-0003-2505-9925
Andréia Mitsa Paiva Negreiros Department of Agronomic and Forestry Sciences, Universidade Federal Rural do Semi-Árido, Mossoró, RN, Brazil https://orcid.org/0000-0002-9544-2527
Naama Jessica de Assis Melo Department of Agronomic and Forestry Sciences, Universidade Federal Rural do Semi-Árido, Mossoró, RN, Brazil https://orcid.org/0000-0002-1437-3436
Márcia Michelle de Queiroz Ambrósio Department of Agronomic and Forestry Sciences, Universidade Federal Rural do Semi-Árido, Mossoró, RN, Brazil https://orcid.org/0000-0002-5033-9745
Josep Armengol Mediterranean Agroforestry Institute, Universitat Politècnica de València, Valencia, Spain https://orcid.org/0000-0003-3815-8578
Washington da Silva Department of Plant Pathology, The Connecticut Agricultural Experiment Station, New Haven, CT, United States of America https://orcid.org/0000-0001-5558-286X
Rui Sales Júnior Department of Agronomic and Forestry Sciences, Universidade Federal Rural do Semi-Árido, Mossoró, RN, Brazil https://orcid.org/0000-0001-9097-0649

DOI:

https://doi.org/10.1590/1983-21252024v3712462rc

Palavras-chave:

Cucurbitáceas. Controle biológico. Fungos habitantes do solo. Hypocreaceae.

Resumo

Fungos patogênicos habitantes do solo estão se tornando um dos maiores desafios para o cultivo de melão globalmente. Existe também uma necessidade para uma redução no uso de agroquímicos devido às restrições de resíduos químicos em melões. Assim, o objetivo deste estudo foi avaliar a eficiência de diferentes fungicidas (difenoconazol, fluazinam, fludioxonil e procimidona) e Trichoderma spp. (T. asperellum, T. harzianum, e dois isolados de T. longibrachiatum), no controle de Ceratobasidium sp., Fusarium falciforme, Macrophomina phaseolina e Monosporascus cannonballus. Fluazinam (EC₅₀ variando de 0,01 a 0,88 mg/L) e fludioxonil (EC₅₀ variando de 0,01 a 0,07 mg/L) foram os fungicidas mais eficientes, com redução do crescimento micelial, e procimidona (EC₅₀ variando de 2,31 a 9,77 mg/L) foi o menos eficiente nos ensaios in vitro. Ceratobasidium sp., F. falciforme, M. phaseolina e M. cannonballus demonstraram alta sensibilidade a fludioxonil. Os isolados de Trichoderma spp. apresentaram alta eficiência no controle dos patógenos nos ensaios in vitro, com inibição do crescimento micelial acima de 70%. Nos experimentos em campo, os tratamentos com Trichoderma demonstraram um bom potencial para reduzir incidência (28,00 a 69,33%) e severidade (0,95 a 2,25) de doenças. Os resultados encontrados demonstram potencial do uso de diferentes fungicidas e Trichoderma spp. para controle de patógenos, in vitro e em campo. Estas estratégias de controle podem ser usadas isoladamente ou em combinação com outras técnicas de manejo, como enxertia e/ou melhoramento genético para resistência, no campo para manejo desses patógenos que ameaçam a produção de melão em todo o mundo.

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Referências

AGROFIT. Sistema de Agrotóxicos Fitossanitários. 2022. Disponível em:<http://agrofit.agricultura.gov.br/agrofit_cons/principal_agrofit_cons>. Acesso em: 7 Mar. 2022.

AMBRÓSIO, M. M .Q. et al. Screening a variable germoplasm collection of Cucumis melo L. for seedling resistance to Macrophomina phaseolina. Euphytica, 206: 287-300, 2015.

AYALA-DOÑAS, A. et al. Management of soil-borne fungi and root-knot nematodes in cucurbits through breeding for resistance and grafting. Agronomy, 10: 1641, 2020.

BELLE, R. B.; FONTANA, D. C. Patógenos de solo: principais doenças vasculares e radiculares e formas de controle. Enciclopédia Biosfera, 15: 779, 2018.

CAVALCANTE, A. L. A. et al. Characterization of Five New Monosporascus Species: Adaptation to Environmental Factors, Pathogenicity to Cucurbits and Sensitivity to Fungicides. Journal of Fungi, 6: 169, 2020.

FAO - Food and Agriculture Organization of the United Nations. FAOSTAT - Crops and livestock products data. 2023. Disponível em: <http://www.fao.org/faostat/en/#home>. Acesso em: 20 set. 2023.

FERREIRA, D. F. Sisvar: A Computer Analysis System To Fixed Effects Split Plot Type Designs. Revista Brasileira de Biometria, 37: 529-535, 2019.

FONSÊCA NETO, J. et al. Efeito de adubo verde e Trichoderma harzianum na sobrevivência de Fusarium solani e no desenvolvimento do meloeiro. Revista AgroAmbiente On-line, 10: 44-49, 2016.

GARDES, M.; BRUNS, T. D. ITS primers with enhanced specificity for Basidiomycetes: Application to identification of mycorrhizae and rusts. Molecular Ecology, 2: 113-118, 1993.

GONÇALVES, C. R.; ALFENAS, A. C.; MAFIA, R. G. Armazenamento de microrganismos em cultura com ênfase em fungos fitopatogênicos. In: ALFENAS, A. C.; MAFIA, R. G. (Eds.). Métodos em Fitopatologia. Viçosa, MG: UFV, 2016. v. 1, cap. 3, p. 93-105.

GONZÁLEZ, V.; ARMIJOS, E.; GARCÉS-CLAVER, A. Fungal Endophytes as Biocontrol Agents against the Main Soil-Borne Diseases of Melon and Watermelon in Spain. Agronomy, 10: 820, 2020.

IBGE - Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística. Produção Agrícola - Lavoura Temporária. 2022. Disponível em: <https://cidades.ibge.gov.br/brasil/pesquisa/14/10193>. Acesso em: 7 Mar. 2023.

KARTASHOV, M. I. et al. Co-application of Difenoconazole with Thymol Results in Suppression of a Parastagonospora nodorum Mutant Strain Resistant to this Triazole. KnE Life Sciences, 4: 1097-1106, 2019.

KESH, H.; KAUSHIK, P. Advances in melon (Cucumis melo L.) breeding: An update. Science Horticulturae, 282: e-110045, 2021.

KORSTEN, L.; JAGER, E. E. Mode of action of Bacillus subtilis for control of avocado post-harvest pathogens. South African Avocado Growers Association Yearbook, 18: 124-130, 1995.

LOUZADA, G. A. S. et al. Antagonist potential of Trichoderma spp. from distinct agricultural ecosystems against Sclerotinia sclerotiorum and Fusarium solani. Biota Neotropica, 9: 145-149, 2009.

MEDEIROS, E. V.; SALES JÚNIOR, R.; MICHEREFF, S. J. Eficiência de fungicidas no controle “in vitro” de Monosporascus cannonballus. Revista Caatinga, 19: 360-368, 2006.

MOKHTARI, W. et al. Potential antagonism of some Trichoderma strains isolated from Moroccan soil against three phytopathogenic fungi of great economic importance. Revue Marocaine des Sciences Agrononomiques et Vétérinaires, 5: 248-254, 2017.

NEGREIROS, A. M. P. et al. Identification and pathogenicity of Macrophomina species collected from weeds in melon fields in Northeastern Brazil. Journal of Phytopathology, 167: 326-337, 2019.

NEGREIROS, A. M. P. et al. Characterization of adaptability components of Brazilian isolates of Macrophomina pseudophaseolina. Journal of Phytopathology, 168: 490-499, 2020.

O’DONNELL, K. et al. DNA Sequence-Based Identification of Fusarium: A Work in Progress. Plant Disease, 106: 1597-1609, 2022.

RHOUMA, A. et al. Antagonistic potential of certain soilborne fungal bioagents against Monosporascus root rot and vine decline of watermelon and promotion of its growth. Novel Research in Microbiology Journal, 2: 85-100, 2018.

SALES JÚNIOR, R. et al. Weeds as alternative hosts of melon colapse pathogens. Revista Ciência Agronômica, 43: 195-198, 2012.

SALES JÚNIOR, R. et al. Caracterização morfológica de fontes de resistência de meloeiro a Rhizoctonia solani. Horticultura Brasileira, 33: 196-202, 2015.

SALVIANO, A. M. et al. A cultura do melão. Brasília, DF: Embrapa, 2017. 202 p.

SÁNCHEZ, A. D. et al. Biocontrol con Trichoderma spp. de Fusarium oxysporum causal del “mal de almácigos” en pre y post emergencia en cebolla. Revista de la Facultad de Agronomía, 114: 61-70, 2015.

SILVA JÚNIOR, F. S. et al. Standardized sampling plan for common blossom thrips management in melon fields from north Brazil. Crop Protection, 134: 1-6, 2020.

SKIDMORE, A. M.; DICKINSON, C. H. Colony interactions and hyphal interference between Septoria nodorum and phylloplane fungi. Transactions of the British Mycological Society, 66: 57-64, 1976.

TONIN, R. F. B. et al. In vitro mycelial sensitivity of Macrophomina phaseolina to fungicides. Pesquisa Agropecuária Tropical, 43: 460-466, 2013.

ZHANG, S. et al. Identification of the antifungal activity of Trichoderma longibrachiatum T6 and assessment of bioactive substances in controlling phytopathogens. Pesticide Biochemistry and Physiology, 147: 59-66, 2018.